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淋巴細胞分離液的使用說明

更新時間:2018-12-03點擊次數:2010
  淋巴細胞分離液為Ficoll、羥乙基淀粉550與泛影酸葡甲胺的混合液。抗凝外周血可在分離液中分層。離心時,在Ficoll、羥乙基淀粉的作用下紅細胞與粒細胞聚集并迅速沉降;此時,淋巴細胞及其他單個核細胞仍處于分離液上層,紅細胞污染可忽略不計。大部分血小板可在細胞清洗低速離心過程中去除。 其他人及動物多種比重細胞分離液,因不同種屬不同比重分離液的細胞離散系數及細胞帶電不同,用戶在制定分離液時應提供所需分離液的比重、動物種屬及被分離細胞的名稱。
  1. 輕輕顛倒瓶子使LSM充分混合
  2. 無菌轉移3 mlLSM到15 ml離心管中。
  3. 混合2 ml除纖維蛋白血液或肝素處理血液 和2 ml 生理鹽水。
  4. 仔細的將稀釋血液加入3 mlLSM(室溫)于15ml離心管中,在血液和LSM中形成一個明顯的分層。不要將稀釋血液混合入LSM中。
  5. 室溫下400g離心15-30分鐘,離心可以沉淀紅細胞和多核白細胞同時可以再LSM上形成一層單核淋巴細胞,如上圖所示。
  6. 吸出淋巴細胞上方2-3mm的血漿。
  7. 吸取淋巴細胞層以及它下面一半的LSM和轉移到另外的一個離心管。加入等體積的平衡鹽緩沖液淋巴細胞離心管中,室溫離心10分鐘,離心速度設定在既不損傷細胞又能沉淀細胞即刻,例如160 - 260 x g(去除LSM和降低血小板的百分比)。
  8. 用平衡鹽緩沖液清洗細胞,用適當的培養基重懸細胞。

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